Antivenin

Un antivenin est une composition biologique utilisée en guise de traitement contre des piqûres ou morsures venimeuses. L'antivenin est créé par extraction du venin du serpent, de l'araignée ou de l'insecte concerné. Le venin est ensuite dilué et injecté dans un cheval, un mouton, un lapin, ou une chèvre. Le système immunitaire du sujet animal réagit, produisant des anticorps contre la molécule active du venin qui peut être récolté dans le sang de l'animal et utilisé pour traiter l'envenimation. À l'international, les antivenins doivent conformer aux règlementations de la pharmacopée et aux exigences de l'Organisation mondiale de la santé[1].

Extraction d'un venin de serpent.

Le terme d'antivenin se compose du mot « venin », qui, lui, provient du mot latin venenum, signifiant « poison ». Historiquement, le terme d'antivenin est très utilisé dans le monde, sa première utilisation datant de 1895[2].

Utilisation

Le principe de l'antivenin se base sur celui du vaccin, développé par Edward Jenner ; cependant, plutôt que d'injecter directement l'immunisation au patient, il est injecté dans un sujet animal, puis le sérum hyper-immunisant est transfusé au patient. Les antivenins peuvent être catégorisés comme monovalents (lorsqu'ils sont efficaces contre une seule espèce animale) ou polyvalents (lorsqu'ils sont efficaces contre plusieurs ou différentes espèces). Le premier antivenin pour serpents (appelé sérum antiophidique) a été développé par Albert Calmette, un scientifique français de l'Institut Pasteur travaillant sur un antidote contre la morsure du Cobra indien (Naja naja). En 1901, Vital Brazil, à l'Instituto Butantan de São Paulo, au Brésil, développe les premiers antivenins monovalents et polyvalents contre les genres Crotalus et Bothrops d'Amérique du Sud et d'Amérique centrale, et également contre certaines espèces d'araignées, de scorpions, et de grenouilles venimeuses.

Les antivenins utilisés à des fins thérapeutiques sont souvent sous forme lyophilisée, bien que certains ne soient disponibles que sous forme liquide et doivent rester au frais (sérum antivenimeux). La majorité des antivenins (dont les antivenins pour serpents) sont administrés par intraveineuse ; cependant, les antivenins contre les genres Synanceia et Latrodectus hasselti sont administrés par injection intramusculaire. La voie intramusculaire a souvent été remise en question dans son efficacité[3].

Un antivenin vise à arrêter les effets du venin, et donc tout dégât supplémentaire, mais n'inverse pas les dégâts déjà occasionnés. De ce fait, il doit être administré le plus vite possible après injection du venin. Depuis l'arrivée des antivenins, certaines morsures auparavant invariablement mortelles sont désormais rarement mortelles si l'antivenin est administré le plus tôt possible. Les antivenins sont purifiés grâce à de nombreux procédés, mais s'accompagneront toujours de protéines d'autres sérums agissant comme antigènes. Certains individus peuvent réagir à l'antivenin avec hypersensibilité immédiate (anaphylaxie) ou avec hypersensibilité retardée. Quoi qu'il en soit, l'antivenin reste le seul traitement efficace face à une condition mortelle. Dans une légende urbaine, un individu allergique aux chevaux « ne peut pas » obtenir d'antivenin, mais les effets secondaires peuvent être pris en charge, et l'antivenin doit être administré tant que ces effets secondaires sont pris en charge[4].

Disponibilité

Les antivenins ont été développés en fonction du venin associé aux animaux et insectes suivants[5] :

Araignées

Antivenin	Espèce ou genre	Pays
Funnel web spider antivenom	Atrax robustus	Australie
Soro antiaracnidico	Phoneutria	Brésil
Soro antiloxoscelico	Loxosceles	Brésil
Suero antiloxoscelico	Loxosceles laeta	Pérou
Aracmyn	Toute espèce de Loxosceles et de Latrodectus	Mexique
Redback spider antivenom	Latrodectus hasselti	Australie
Black widow antivenom	Veuve noire	États-Unis
SAIMR Spider antivenom	Latrodectus cinctus	Afrique du Sud
Anti-venin anti-Latrodectus	Veuve noire	Argentine

Tiques

Antivenin	Espèce ou genre	Pays
Tick antivenom	Tique paralysante	Australie

Insectes

Antivenin	Espèce ou genre	Pays
Zoro antilonomico	Lonomia obliqua	Brésil

Scorpions

Antivenin	Espèce ou genre	Pays
Inoscorpi MENA (Moyen-Orient & Afrique du Nord)	Androctonus australis, Androctonus mauritanicus, Androctonus crassicauda, Buthus occitanus occitanus, Buthus occitanus mardochei, Leiurus quinquestriatus quinquestriatus, Leiurus quinquestriatus hebraeus.	Espagne
Alacramyn	Centruroides limpidus, C. noxius, C. suffusus	Mexique
Suero Antialacran	Centruroides limpidus, C. noxius, C. suffusus	Mexique
Antivenin polyvalent tunisien	Toute espèce de scorpions iraniens	Tunisie
Anti-Scorpion Venom Serum I.P. (AScVS)	Hottentotta tamulus	Inde
Anti-scorpionique	Androctonus spp., Buthus spp.	Algérie
Anti-scorpionique	Scorpion noir, Buthus occitanus	Maroc
Soro antiscorpionico	Tityus spp.	Brésil
SAIMR scorpion antivenin	Parabuthus spp.	Afrique du Sud
Purified prevalent Anti-Scorpion Serum (equine)	Scorpions Leiurus spp. & Androctonus	Égypte

Animaux marins

Antivenin	Espèce ou genre	Pays
CSL box jellyfish antivenom	Chironex fleckeri	Australie
CSL stonefish antivenom	Synanceia	Australie

Serpents

Antivenin	Espèce ou genre	Pays
Inoserp MENA (Moyen-Orient & Afrique du Nord)	Bitis arietans, Cerastes cerastes, Cerastes gasperettii, Cerastes vipera, Daboia deserti, Daboia mauritanica, Daboia palaestinae, Echis carinatus sochureki, Echis coloratus, Echis khosatzkii, Echis leucogaster, Echis megalocephalus, Echis omanensis, Echis pyramidum, Macrovipera lebetina obtusa, Macrovipera Iebetina transmediterranea, Macrovipera Iebetina turanica, Montivipera bornmuelleri, Montivipera raddei kurdistanica, Pseuocerastes fieldi, Pseudocerastes persicus, Vipera latastei, Naja haje, Naja nubiae, Naja pallida and Walterinnesia aegyptia.	Espagne
Inoserp PAN-AFRICA	Echis ocellatus, Echis leucogaster, Echis pyramidum, Bitis arietans, Bitis rhinoceros, Bitis nasicornis, Bitis gabonica and Dendroaspis polylepis, Dendroaspis viridis, Dendroaspis angusticeps, Dendroaspis jamesoni, Naja nigricollis, Naja melanoleuca, Naja haje, Naja pallida, Naja nubiae, Naja katiensis and Naja senegalensis.	Espagne
Antivenin polyvalent	Crotalus durissus sud-américain, et Bothrops asper fer-de-lance	Mexique
Antivenin polyvalent	Crotalus durissus sud-américain, et Bothrops asper fer-de-lance	Amérique du Sud
Antivenin polyvalent	Echis carinatus, Daboia russelli, Naja naja, Bungarus caeruleus	Inde
Death adder antivenom	Agkistrodon contortrix	Australie
Taipan antivenom	Oxyuranus	Australie
Black snake antivenom	Pseudechis spp.	Australie
Tiger snake antivenom	Austrelaps, serpents-tigre, Pseudechis spp.	Australie
Brown snake antivenom	Pseudonaja	Australie
Polyvalent snake antivenom	Nombreuses espèces de serpents australiens	Australie
Sea snake antivenom	Hydrophiinae	Australie
Vipera tab	Vipera spp.	États-Unis
Polyvalent crotalid antivenom (CroFab—Crotalidae Polyvalent Immune Fab (Ovine))	Crotalinae nord-américains	Amérique du Nord
Soro antibotropicocrotalico	Crotalinae	Brésil
Antielapidico	Serpents corail	Brésil
SAIMR polyvalent antivenom	Mambas, Cobras, cobras cracheurs, Bitis (B. worthingtoni, B. atropos, B. caudalis, B. cornuta, B. heraldica, B. inornata, B. peringueyi, B. schneideri, B. xeropaga)	Afrique du Sud[6]
SAIMR echis antivenom	Echis	Afrique du Sud
SAIMR Boomslang antivenom	Serpents des arbres	Afrique du Sud
Panamerican serum	Serpents corail	Costa Rica
Anticoral	Serpents corail	Costa Rica
Anti-mipartitus antivenom	Serpents corail	Costa Rica
Anticoral monovalent	Serpents corail	Costa Rica
Antimicrurus	Serpents corail	Argentine
Coralmyn	Serpents corail	Mexique
Anti-micruricoscorales	Serpents corail	Colombie

Notes et références

Theakston RD, Warrell DA, Griffiths E, « Report of a WHO workshop on the standardization and control of antivenoms », Toxicon, vol. 41, n^o 5,‎ avril 2003, p. 541–57 (PMID 12676433, DOI 10.1016/S0041-0101(02)00393-8, lire en ligne).
(en) « Antivenin », sur Merriam-Webster (consulté le 13 juin 2014).
(en) Isbister GK., « Failure of intramuscular antivenom in Redback spider envenoming », Emerg Med (Fremantle), vol. 14, n^o 4,‎ 2002, p. 436–9 (PMID 12534488, DOI 10.1046/j.1442-2026.2002.00356.x).
(en) Voir par exemple en anglais le paragraphe Antivenom Precautions concernant le médicament à James Forster, MD, MS, « Snake Envenomations, Sea », eMedicine Emergency Medicine (environmental), 14 mars 2006 (consulté le 25 juin 2006).
(en) « Appendix: Antivenom Tables », Clinical Toxicology, vol. 41, n^o 3,‎ 2003, p. 317–27 (DOI 10.1081/CLT-120021117)
(en) S Spawls et Branch B, The Dangerous Snakes of Africa. Ralph Curtis Books, Dubaï, Oriental Press, 1995 (ISBN 978-0-88359-029-4), p. 192..

Voir aussi

Liens externes

(en) Morsure de serpent sur eMedicine.
(en) New antivenom could save more snakebite victims
(en) Red Cross snake antivenom

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[1] Theakston RD, Warrell DA, Griffiths E, « Report of a WHO workshop on the standardization and control of antivenoms », Toxicon, vol. 41, n^o 5,‎ avril 2003, p. 541–57 (PMID 12676433, DOI 10.1016/S0041-0101(02)00393-8, lire en ligne).

[2] (en) « Antivenin », sur Merriam-Webster (consulté le 13 juin 2014).

[EmergMed2002-isbister-3] (en) Isbister GK., « Failure of intramuscular antivenom in Redback spider envenoming », Emerg Med (Fremantle), vol. 14, n^o 4,‎ 2002, p. 436–9 (PMID 12534488, DOI 10.1046/j.1442-2026.2002.00356.x).

[4] (en) Voir par exemple en anglais le paragraphe Antivenom Precautions concernant le médicament à James Forster, MD, MS, « Snake Envenomations, Sea », eMedicine Emergency Medicine (environmental), 14 mars 2006 (consulté le 25 juin 2006).

[Antivenom_Tables-5] (en) « Appendix: Antivenom Tables », Clinical Toxicology, vol. 41, n^o 3,‎ 2003, p. 317–27 (DOI 10.1081/CLT-120021117)

[SB95-6] (en) S Spawls et Branch B, The Dangerous Snakes of Africa. Ralph Curtis Books, Dubaï, Oriental Press, 1995 (ISBN 978-0-88359-029-4), p. 192..