Glutatión S-transferasa

Las Glutatión S-transferasas (GST) son una familia de isoenzimas metabólicas eucariotas y procariotas de fase II, conocidas por su capacidad para catalizar la conjugación de forma reducida de glutatión a sustratos xenobióticos con fines de desintoxicación. La familia consta de tres superfamilias: proteínas citosólicas, mitocondriales y microsómicas.[1][2] Los miembros de las GST son extremadamente diversos en su secuencia de aminoácidos. Una porción considerable de las secuencias que constan en las bases de datos públicas tienen una función aún desconocida.[3]

Glutatión S-transferasa

Estructura cristalográfica de la glutatión S-transferasa de Anopheles cracens.
Estructuras disponibles
PDB
 Estructuras enzimáticas
RCSB PDB, PDBe, PDBsum
Identificadores
Identificadores
externos
 Bases de datos de enzimas
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PRIAM: perfil PRIAM
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MetaCyc: vía metabólica
Número EC 2.5.1.18
Número CAS 50812-37-8
Ortólogos
Especies
Humano Ratón
PubMed (Búsqueda)


PMC (Búsqueda)

Las glutatión S-transferasas pueden constituir hasta el 10% de la proteína citosólica en algunos órganos de los mamíferos.[4][5] Catalizan la conjugación de glutatión, a través de un tiol, con centros electrofílicos de una amplia variedad de sustratos, aumentando la solubilidad en agua de los compuestos.[6][7] Su actividad desintoxica compuestos endógenos como lípidos oxidados y permite la descomposición de los xenobióticos. También pueden unirse a las toxinas y funcionar como proteínas de transporte, lo cual dio lugar a su primera denominación, ligandinas.[8][9]

Clasificación

La secuencia y estructura de proteínas son criterios fundamentales para la clasificación de las tres superfamilias (citosólicas, mitocondriales y microsómicas) de Glutatión S-transferasas: Las clases de la familia citosólica poseen más del 40% secuencias homólogas en comparación con las demás, que tienen menos del 25%. Las GST citosólicas se dividen en 13 clases según su estructura: alfa, beta, delta, épsilon, zeta, theta, mu, nu, pi, sigma, tau, phi y omega. Las mitocondriales se encuentran en la clase kappa. Las microsómicas constan de subgrupos designados del I al IV, entre los cuales las secuencias de aminoácidos comparten menos del 20% de homología.

Las glutatión S-transferasas presentes en humanos pertenecen a las clases alfa, zeta, theta, mu, pi, sigma y omega. También se tiene constancia de la existencia de seis isoenzimas de las clases I, II y IV.[7][10][11]

Nomenclatura

La primera nomenclatura estandarizada para identificar a las glutatión S-transferasas fue propuesta en 1992. En ella, primero se identifica con una letra minúscula la especie a la que pertenece la isoenzima objeto de estudio (por ejemplo, "h" para humanos), seguida de la abreviatura GST. A continuación, la clase se identifica con una letra mayúscula (por ejemplo, "A" para alfa), seguida del número representativo de la subfamilia. Dado que tanto los GST mitocondriales como los citosólicos existen como dímeros y solo se forman heterodímeros entre miembros de la misma clase, el segundo componente de la subfamilia del dímero enzimático se denota con un guion, seguido de otro número adicional. Por tanto, si una GST humana es un homodímero de la subfamilia de clase Pi 1, su nombre se escribirá como «hGSTP1-1».

La nomenclatura temprana para los GST se refirió a ellos como proteínas "Y", refiriéndose a su separación en la fracción "Y" (a diferencia de las fracciones "X y Z") utilizando la cromatografía de Sephadex G75.[12] A medida que se iban identificando nuevas subunidades, estas se iban nombrando con la denominación Ya, Yp, etc. Si era necesario, este se acompañaba de un número identificativo de la isoforma del monómero (por ejemplo, Yb1).

En el ámbito de la química clínica y la toxicología, los términos αGST, μGST y πGST son los más utilizados.

Estructura

El sitio de unión al glutatión, o "Sitio G", se encuentra en el dominio similar al de la tiorredoxina en las glutatión S-transferasas citosólicas y mitocondriales. La región que contiene la mayor variabilidad entre las clases es la de la hélice α2, donde uno de los tres residuos de aminoácidos diferentes interactúa con el residuo de glicina del glutatión. Se han caracterizado dos subgrupos de GST citosólicos en función de su interacción con el glutatión: el grupo Y-GST, que utiliza residuo de tirosina para activar el glutatión, y el S/C-GST, que en su lugar utiliza residuos de serina o cisteína.[7][3]

Las enzima porcinas de de clase pi pGTSP1-1 fue la primera GST en tener su estructura determinada, y es representativa de otros miembros de la superfamilia GST citosólica, que contienen un dominio similar a las tiorredoxinas N-terminales así como un dominio C-terminal que consiste en hélices alfa.[7][13]

Las GST citosólicas de los mamíferos son dímericas, con ambas subunidades pertenecientes a la misma clase, aunque no necesariamente idénticas. Los monómeros tienen un tamaño de aproximadamente 25 kDa.[10][14] Están activos sobre una amplia variedad de sustratos con una superposición considerable.[15]

En la siguiente tabla se enumeran todas las enzimas GST de cada clase de las que se tiene constancia de su existencia en humanos en el repositorio UniProt.

Clases de GST GST miembros de la clase en Homo sapiens (22)
Alfa GSTA1, GSTA2, GSTA3, GSTA4, GSTA5
Delta
Kappa GSTK1
Mu GSTM1, GSTM1L (RNAi), GSTM2, GSTM3, GSTM4, GSTM5
Omega GSTO1, GSTO2
Pi GSTP1
Theta GSTT1, GSTT2, GSTT4
Zeta GSTZ1 (MAAI-Maleylacetoacetato isomerasa)
Microsómicas MGST1, MGST2, MGST3

Función

La actividad de las glutatión S-transferasas depende de un suministro constante de glutatión de las enzimas sintéticas ligasa glutamato-cisteína y glutatión sintetasa, así como de la acción de transportadores específicos para eliminar conjugados de glutatión de la célula. El papel principal de las GST es desintoxicar los xenobióticos catalizando el ataque nucleófilo por glutatión en átomos electrófilos de carbono, azufre o nitrógeno de dichos sustratos xenobióticos no polares, evitando así su interacción con proteínas celulares cruciales y ácidos nucleicos.[11][16] En este cometido, su función es doble: unirse tanto al sustrato en el sitio hidrofóbico H de la enzima como al glutatión en el sitio G hidrofílico adyacente, que juntos forman el sitio activo de la enzima; y posteriormente activar el grupo tiol del glutatión, permitiendo el ataque nucleofílico al sustrato.[10] La molécula de glutatión se une en una hendidura entre los dominios terminales N y C; los residuos catalíticamente importantes residen en el dominio terminal N.[17] Ambas subunidades del dímero, ya sean de naturaleza heterodimérica u homodimérica, contienen un solo sitio de unión sin sustratos, así como un sitio de unión al glutatión. Sin embargo, en GST complejas heterodiméricos como las formados por las clases citosólicas mu y alfa, la hendidura entre las dos subunidades alberga un sitio adicional de unión xenobiótica sin sustrato de alta afinidad, que puede explicar la capacidad de las enzimas para formar heterodímeros.[16][18]

Los compuestos a los que se dirigen de esta forma las glutatión S-transferasas abarcan una amplia gama de toxinas ambientales o exógenas de todo tipo, incluyendo agentes quimioterapéuticos y otros medicamentos, pesticidas, herbicidas, carcinógenos, y epóxidos derivados de forma variable. De hecho, las GST son responsables de la conjugación de β1-8,9-epóxido, un intermediario reactivo formado por aflatoxina B1, que es un medio crucial de protección contra la toxina en roedores. Las reacciones de desintoxicación comprenden los primeros cuatro pasos de la síntesis de ácido mercaptúrico,[16] con la conjugación a glutatión que sirve para hacer que los sustratos sean más solubles y permitir que sean eliminados de la célula por transportadores como la proteína 1 multirresistente (MRP1).[7] Después de la exportación, los aductos se convierten en ácidos mercaptúricos y se excretan a través de orina o bilis.[11]

La mayoría de las isoenzimas de mamíferos tienen afinidad por el sustrato 1-cloro-2,4-dinitrobenceno, y los ensayos espectrofotométricos que utilizan este sustrato se utilizan comúnmente para informar sobre la actividad de las GST.[19] Sin embargo, algunos compuestos endógenos, por ejemplo, la bilirrubina, pueden inhibir la actividad de las GST. En los mamíferos, las isoformas tienen distribuciones específicas de las células (por ejemplo, α-GST en los hepatocitos y π-GST en el tracto biliar del hígado humano).[20] Las glutatión S-transferasas también tienen un papel en la bioactivación del profármaco clopidogrel.[21]

Rol en la comunicación celular
Esquema simplificado de las vías MAPK en mamíferos, organizada en tres módulos principales de señalización (ERK1/2, JNK/p38 y ERK5).

Aunque son más conocidos por su capacidad para conjugar xenobióticos con glutatión y con ello desintoxicar los entornos celulares, las Glutatión S-transferasas también son capaces de unirse a ligandos de no sustrato, con importantes implicaciones en la comunicación celular. Se ha demostrado que las isoenzimas GST de varias clases inhiben la función de la quinasa involucrada en la vía MAPK/ERK que regula la proliferación celular y la muerte celular programada, evitando que la quinasa lleve a cabo su cometido en facilitar la comunicación.[22]

La GSTP1-1 citosólica, una isoenzima de la familia de las Glutatión S-transferasas presente en mamíferos, se expresa principalmente en los tejidos cardíacos, pulmonares y cerebrales; de hecho, es la GST que se expresa de forma más común fuera del hígado.[22][23] Basándose en su sobreexpresión en la mayoría de las líneas celulares tumorales humanas y prevalencia en tumores resistentes a la quimioterapia, existen indicios de que la GSTP1-1 juega un papel en el desarrollo del cáncer y en su potencial resistencia al tratamiento con fármacos. Otra evidencia de esto se fundamenta en el conocimiento de que la GSTP1 puede inhibir selectivamente la fosforilación de C-Jun por las cinasas c-Jun N-terminal (JNK), previniendo la apoptosis.[22] Durante los momentos de bajo estrés celular, se forma un complejo a través de interacción proteína-proteína entre GSTP y el extremo C de las JNK, previniendo eficazmente la acción de estas y, por lo tanto, su inducción de la vía JNK. El estrés oxidativo celular causa la disociación del complejo, la oligomerización del GSTP y la inducción de la vía JNK, lo que resulta en apoptosis.[24] La conexión entre la inhibición del GSTP de la vía JNK proapoptótica y la sobreexpresión de la isoenzima en células tumorales farmacorresistentes puede explicar en sí misma la capacidad de las células tumorales para escapar de la apoptosis mediada por medicamentos que no son sustratos del GSTP.[22]

Al igual que la GSTP, la GSTM1 (GSTM1) está involucrada en la regulación de las vías apoptóticas a través de interacciones directas proteína-proteína, aunque actúa en ASK1, que está por encima de JNK. El mecanismo y el resultado son similares a los anteriormente decritos, ya que la GSTM1 secuestra ASK1 a través de formación compleja y evita su inducción de las porciones proapoptóticas p38 y JNK de la vía de comunicación MAPK. Al igual que el caso anterior, la GSTM1 interactúa con su pareja en ausencia de estrés oxidativo, aunque ASK1 también está involucrado en la respuesta al choque térmico, que también se previene durante el secuestro de ASK1. El hecho de que los altos niveles de GST estén asociados con la resistencia a la apoptosis inducida por una serie de sustancias, incluidos los agentes quimioterapéuticos, apoya su supuesto papel en la prevención de la comunicación MAPK.[24]

Así, la investigación ha acrecentado la evidencia de que las Glutatión S-transferasas, y en particular la GSTP están involucradas en el desarrollo del cáncer y en la resistencia quimioterapéutica. El vínculo entre el GSTP y el cáncer es más evidente en la sobreexpresión del GSTP en muchos cánceres, pero también está respaldado por el hecho de que el fenotipo transformado de células tumorales está asociado con vías de quinasa reguladas aberrantemente y la adicción celular a proteínas sobreexpresadas. El hecho de que la mayoría de los medicamentos contra el cáncer sean sustratos pobres para GSTP indica que el papel del GSTP elevado en muchas líneas celulares tumorales no es desintoxicar los compuestos, sino que debe tener otro propósito; esta hipótesis también es acreditada por el hallazgo común de sobreexpresión de GSTP en líneas celulares tumorales que no son resistentes a fármacos.[25]

Importancia clínica

Además de sus funciones en el desarrollo del cáncer y en la resistencia a los medicamentos quimioterapéuticos, los GST están implicados en una variedad de enfermedades en función de su participación en el glutatión. Aunque las pruebas son mínimas para la influencia de polimorfismos de las GST de las clases alfa, mu, pi y theta sobre la susceptibilidad a varios tipos de cáncer, numerosos estudios han implicado tales variaciones genotípicas en asma, aterosclerosis, alergias, y otras enfermedades inflamatorias.[16]

Debido a que la diabetes es una enfermedad que implica daño oxidativo, y el metabolismo del glutatión es disfuncional en pacientes diabéticos, las glutatión S-transferasas pueden ser un objetivo potencial para los fármacos que tratan esta enfermedad. Además, se sabe que la administración de insulina resulta en un aumento de la expresión génica de las GST a través de las vías PI3K/AKT/mTOR y la reducción del estrés oxidativo intracelular, mientras que el glucagón disminuye dicha expresión génica.[26]

En particular, los genes GST de clase omega (GSTO) están asociados con enfermedades neurológicas como el Alzheimer, el Parkinson y la esclerosis lateral amiotrófica. Una vez más, se cree que el estrés oxidativo es el culpable, con una disminución de la expresión génica GSTO que resulta en una menor edad de inicio de las enfermedades.[27]

Liberación de glutatión S-transferasas como indicador de daño orgánico

Las altas concentraciones intracelulares de glutatión S-transferasas junto con su distribución celular específica les permiten funcionar como biomarcadores para localizar y monitorizar lesiones a tipos celulares definidos. Por ejemplo, los hepatocitos contienen altos niveles de αGST y ha demostrado que el αGST sérico es un indicador de lesión de hepatocitos en trasplantes de hígado, toxicidad e infecciones virales.[28][29][30]

Del mismo modo, en los seres humanos las células tubulares proximales renales contienen altas concentraciones de αGST, mientras que las células tubulares distales contienen πGST.[31] Esta distribución específica permite utilizar la medición de las GST urinarias para cuantificar y localizar la lesión tubular renal en trasplantes de riñón, nefrotoxicidad y lesiones isquémicas.[32]

En estudios preclínicos en roedores, la αGST urinaria y sérica han demostrado ser indicadores sensibles y específicos de necrosis tubular proximal renal y hepatocitaria, respectivamente.[33][34]

Marcadores y ensayos de immunoprecipitación

Las glutatión S-transferasas se puede agregar a una proteína de interés para purificarla de una solución en un proceso conocido como inmunoprecipitación. Esto se logra insertando la secuencia de codificación de ADN GST junto a la que codifica para la proteína de interés. Por lo tanto, después de la transcripción y traducción, la proteína GST y la proteína de interés se expresarán juntas como proteínas de fusión. Debido a que la proteína GST tiene una fuerte afinidad de unión por glutatión, las cuentas recubiertas con el compuesto se pueden agregar a la mezcla de proteínas. Como resultado, la proteína de interés unida a la GST se pegará a ellas, aislando la proteína del resto de las que están en solución. Estas se recuperan y lavan con GSH libre para separarlas de la proteína de interés, lo que resulta en una proteína purificada. Esta técnica se puede utilizar para dilucidar las interacciones directas proteína-proteína. Un inconveniente de este ensayo es que la proteína de interés está unida a la GST, alterando su estado nativo.[35][36]

Los marcadores GST se usan habitualmente para separar y purificar proteínas que contienen la proteína de fusión GST. El marcador contiene 220 aminoácidos (un tamaño aproximado de 26 kDa),[37], lo cual lo hace bastante grande en comparación con otros marcadores como Myc-tag o FLAG-tag. Se puede fusionar con el N-terminal o C-terminal de una proteína. Además de funcionar como un marcador de purificación, la GST actúa como acompañante para la proteína adherida, promoviendo su correcto plegamiento, así como evitando que se agregue en los cuerpos de inclusión cuando se expresa en bacterias. El marcador puede ser eliminado posteriormente mediante la adición de trombina proteasa si se ha insertado un sitio de división adecuado entre la etiqueta GST y la proteína de interés (que generalmente se incluye en muchas fuentes disponibles comercialmente de plásmidos etiquetados para GST).[35][38]

Véase también

Referencias
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