Ehrlichiose

Le terme de « ehrlichiose » regroupe (sous des symptômes proches ou identiques) deux groupes de maladies, chacun de ces groupes étant différent en terme épidémiologique et étiologique ; ehrlichiose monocytique animale (EMA) et / ou ehrlichiose monocytique humaine (EMH) également nommée « ehrlichiose à Ehrlichia chaffeensis[1] » et anaplasmose humaine.

Ehrlichiose
Causes Ehrlichia chaffeensis (en), Ehrlichia phagocytophila (d), Ehrlichia muris (en), Ehrlichia ewingii (en) et Ehrlichia canis (en)
Transmission Transmission par les tiques (d) et infection nosocomiale
Incubation min 1 j
Incubation max 2 semaine
Symptômes Céphalée, fatigue, myalgie, fièvre, nausée et toux
Traitement
Médicament Doxycycline, tétracycline, chloramphénicol, carbapénème, céfépime et vancomycine
Spécialité Infectiologie
Classification et ressources externes
CIM-9 082.4
MedlinePlus 001381
eMedicine 235839
MeSH D016873
Patient UK Ehrlichiosis

Mise en garde médicale

Ce sont des zoonoses induites par des bactéries (les Ehrlichia) qui sont des intracellulaires obligatoires. Les ehrlichioses semblent dans la plupart des cas être des maladies vectorielles (maladies à tiques plus précisément). Les bactéries Ehrlichia véhiculées par les tiques peuvent être différentes selon les zones biogéographiques ou continents considérés ; par exemple chez l'Humain aux États-Unis, les deux bactéries en cause dans les ehrlichiose monocytique humaine sont Ehrlichia chaffeensis (en) et moins fréquemment Ehrlichia ewingii (en). Ces deux bactéries causent des maladies de plus en plus souvent détectées (sans doute par ce qu'elles sont mieux recherchées, mais aussi parce que les populations de tiques ont fortement augmenté) sur des zones géographiques correspondant assez bien à la densité en tiques, mais pas tout à fait aux zones les plus à risques pour la maladie de Lyme. Le centre-est des États-Unis est plus touché, alors que c'est le nord-est qui est plus touché par la maladie de Lyme. Les 30-70 ans semblent largement plus touchés (ou meilleure détection ?) que les enfants et jeunes adultes[2].

Histoire
Le cerf de virginie (environ 30 millions d'individus en Amérique du Nord) est l'espèce-réservoir des ehrlichia dans cette région ; Les tiques parasitant ce cerf y sont les principaux vecteurs des erhlichia.

L'ehrlichiose a d'abord été décrite chez l'animal. Des infections humaines à Ehrlichia n'ont été diagnostiquées que plus récemment, avec d'abord l’ehrlichiose du Japon en 1953, et beaucoup plus tardivement (en 1987) l’ehrlichiose monocytaire humaine avant que ne soit découverte en 1994 l'ehrlichiose granulocytaire humaine[3].

Il a été démontré également que la même bactérie peut infecter l'humain et l'animal ; deux autres espèces responsables d’ehrlichioses canines ont été décrites chez l’humain : Ehrlichia canis[4] et Ehrlichia ewingii (en).

Les ehrlichioses étaient des maladies considérées comme rares jusque vers 1995, mais des études de séro-prévalence ont depuis montré qu'elles sont en augmentation et/ou qu'elles avaient été sous-diagnostiquées.

Une augmentation est d'autant plus plausible (ce qui en fait une maladie émergente [5]), que ces augmentations (réelles et/ou apparentes) correspondent aux zones où les tiques pullulent depuis quelques décennies, et où d'autres maladies émergentes sont avérées (dont la maladie de Lyme). Des co-infections via les tiques sont d'ailleurs possibles et semblent fréquentes dans ces zones. Le cerf de virginie dont la population est importante en Amérique du Nord (environ 30 millions d'individus) y est l'espèce-réservoir des ehrlichia ; Les tiques qui le parasitent et qui piquent parfois aussi l'humain sont le principal vecteur des erhlichia dans cette zone biogéographique. Ce cerf diffuse la maladie sur de vastes distances (dont vers les animaux domestiques) d'autant mieux que ses prédateurs naturels carnivores sauvages (loup, lynx, ours, cougar..) ont disparu de la presque totalité de son aire de répartition. Cet animal bénéficie en outre de plans de chasse favorables et en tant que gibier commercialement intéressant, il est souvent alimenté en hiver, ce qui permet la survie d'animaux fortement parasités, qui auraient normalement été éliminés par sélection naturelle.

Gravité de l’infection

Chez l'animal

Les guérisons spontanées sont fréquentes, mais une forme chronique peut s'installer et conduire à la mort.

Chez les humains

Pour l’EMH : 60 % des malades sont hospitalisés, avec 2 à 3 % de décès. Pour l'anaplasmose, 28 à 54 % des malades sont hospitalisés (selon les sources), avec 7 à 10 % de décès. Lorsque le malade guérit, il y a guérison spontanée sans traitement après 10 jours de fièvre chez l’enfant, mais l’adulte est victime d'une infection plus chronique, avec fièvre rémittente durant 3 à 11 semaines.

Le risque de décès est élevé chez l'immunodéficient[6].

Immunisation relative

Chez le cheval, l’anaplasmose confère une immunité durable, mais cela n’est pas prouvé chez l’humain. S. Dumler rapporte quelques cas de patients ayant présenté un deuxième épisode d’anaplasmose dans l’année suivant l’épisode initial, mais sans pouvoir préciser s’il s’agissait de réinfection ou de recrudescence de la maladie[6].

Il était donc pensé qu'il n’existait pas de forme persistante, ou de forme chronique, d'autant plus que la plupart des patients guérit rapidement. Le cas d'un patient italien infecté depuis plus de 3 mois ébranle sérieusement cette conviction[7].

Co-infections

La co-infection semble fréquente et peut perturber le diagnostic et le traitement et induisent des formes cliniques plus sévères et chroniques[8],[9].

En Amérique du Nord, les chercheurs ont montré qu'elle était fréquente avec la borréliose de Lyme, et moindrement la babésiose murine. En Europe, les études manquent pour l’anaplasmose humaine mais en zone de co-endémie les données suggèrent des co-infections avec Borrelia, et moindrement Babesia ou le virus TBEV-CEE[10].

Symptômes

La maladie s'exprime (une à trois semaines après la morsure de tique) par un syndrome grippal aigu et non spécifique (avec fièvre dans 98 % des cas), des céphalées (81 % des cas),des myalgies (68 % des cas) et des signes digestifs possibles (anorexie, nausées, vomissements, maux de ventre dans 50 % des cas environ), ou une conjonctivite. Parfois des pharyngites, une toux, ou des lymphadénopathies sont observées (25 % des cas) avec aussi un état confusionnel dans environ 25 % des cas.

Les symptômes sont peu spécifiques et facilement confondus avec ceux d'une grippe. Un syndrome grippal survenant chez toute personne à risque et surtout de mai à octobre doit faire évoquer la maladie. Une fiche médicale de renseignements doit accompagner le prélèvement de seconde intention.

Une pneumopathie atypique associée est fréquente aux États-Unis, et une pneumonie interstitielle a été décrite en Alsace en 2002[11]. Des éruptions cutanées sont plus fréquentes dans l’EMH, dans environ 30 % cas (elles sont rares en cas l’anaplasmose granulocytaire, environ 2 %), principalement dans la première semaine, leur répartition est indépendante de la localisation de la morsure.

Formes cliniques : elles varient en modalités et intensités, de formes asymptomatiques (Selon S. Dumler seul 1 % des cas seraient diagnostiqués aux États-Unis les autres étant infra-cliniques ou faisant l'objet d'erreurs de diagnostic) à des formes mortelles et nosocomiales (avérée dans un cas en Chine). La mort est due à une septicémie, détresse respiratoire aiguë, rhabdomyolyse, hémorragies, neuropathies périphériques ou à des infections opportunistes ou nosocomiales avec éventuelles complications graves ; rénales, hépatiques ou cardiaques parfois. 50 à 60 % des malades (aux États-Unis) meurent dans les formes graves[12],[13]. Un diagnostic et des soins précoces atténuent la gravité des épisodes.

Une hypothèse (établie à partir de cas animaux, mais à confirmer) est que des infections répétées pourraient ensuite dégénérer en phase chronique sévère[14].

Indices pour le diagnostic

Ils sont surtout hématologiques, et importants et bien visibles la première semaine des manifestations de l'infection : leucopénie dans 60 % des cas, thrombocytopénie dans 68 % des EMH et 90 % des anaplasmoses, anémie modérée dans 50 % des cas et inclusions caractéristiques (morulae ou corps élémentaires) dans le cytoplasme des neutrophiles. Avec insuffisance rénale dans 70 % des cas, élévation modérée des transaminases hépatiques dans 86 % des cas, et LDH et la bilirubine sont élevées dans tous les cas testés, Le frottis sanguin (coloré) montre (mais pas toujours facilement pour un non spécialiste) des morulae pathognomoniques. Les morulae ne sont visibles que dans 1 à 42 % des polynucléaires neutrophiles circulant pour l'anaplasmose (et dans les monocytes et macrophages pour l’EMH)[15].

Il en existe aussi dans les phagosomes des macrophages de la rate, du foie, des poumons, des reins, de la moelle osseuse et du LCS (détectées à l'autopsie)[16].

Diagnostic sérologique : l'immunofluorescence indirecte (IFI), à partir de la 3e semaine peut souvent confirmer le diagnostic. Un test ELISA existe maintenant pour l'anaplasmose humaine, basé sur l’antigène recombinant HGE 44 et qui semble dépourvu de réactions croisées avec la borréliose de Lyme, la syphilis, la polyarthrite rhumatoïde et l’ehrlichiose monocytique humaine[17].

La ponction céphalorachidienne (PCR) permet maintenant une confirmation en 24 à 48 heures, ce qui permet de limiter les risques de complications (rares mais graves) par un traitement précoce.

Un cas clinique d’ehrlichiose est certain à 5 différentes conditions :

  • un taux d'anticorps anti-A. phagocytophilum augmentant d’au moins quatre fois le titre entre la phase aiguë et la convalescence, avec un minimum de 1/64,
  • la PCR est positive, des morulae sont identifiées dans les leucocytes et
  • le taux d'anticorps anti-A. phagocytophilum est positif (selon les seuils de positivité de chaque laboratoire),
  • la coloration immuno-histo-chimique de l'antigène A. phagocytophilum est positive (sur biopsie ou tissus d'autopsie),
  • et ainsi que la culture d’A. phagocytophilum.

Un cas est dit probable si le syndrome grippal intervient avec sérologie au moins égale à 1/80 en IFI, ou si des morulae sont visibles dans les frottis sanguins[8].

La sérologie peut ne pas se positiver si le traitement a été très précoce (la PCR permet alors un diagnostic de certitude). La sérologie est positive chez 100 % des autres convalescents et peut le rester jusqu’à 4 ou 5 ans après l'infection. Une sérologie positive n'indique cependant pas nécessairement une infection aiguë (2/3 au moins des séroconversions sont asymptomatiques[5]. Quelques réinfections documentées dans les deux ans suivant une infection par A. phagocytophilum montrent que l’immunité n’est pas durable ou pas toujours durable[15]. Seule l’évolution de la sérologie permet de conclure.

En cas de complications neurologiques, l’étude du liquide cérébrospinal (LCS) montre une pléocytose avec morulae dans les phagosomes des leucocytes. L’immunocytologie et la PCR prouvent aussi la présence d’Ehrlichia ou d'Anaplasma dans le LCS[15].

Un consensus d'aide décisionnelle pour une bonne pratique de la prise en charge diagnostique des borréliose de Lyme, anaplasmose granulocytaire humaine et babésiose a été réalisé aux États-Unis (ISDA, )[18].

Notes et références
  1. (en) Anderson BE, Dawson JE, Jones DC, Wilson KH. « Ehrlichia chaffeensis, a new species associated with human ehrlichiosis » J Clin Microbiol. 1991;29:2838-2842 (Voir)
  2. statistiques, cartes (2001-2002), graphes (1999-2006), et nombre de cas selon l'âge (2001-2002), par les CDC, pour l'ehrlichiose aux USA
  3. (en) Dumler JS, Bakken JS. « Ehrlichial diseases of humans: emerging tick-borne infections » Clin Infect Dis. 1995;20:1102-1110. PMID 7619983
  4. (en) Maeda K, Markowitz N, Hawley RC, Ristic M, Cox D, McDade JE. « Human infection with Ehrlichia canis, a leukocytic rickettsia » N Engl J Med. 1987;316:853-856. PMID 3029590
  5. (en) Fishbein DB, Dennis DT. « Tick-borne Diseases, a growing risk » New Engl J Med 1995;333(7):452-3. PMID 7616997
  6. (en) Dumler JS, Bakken JS. « Human ehrlichioses: newly recognized infections transmitted by ticks » Annu Rev Med. 1998; 49: 201-213. PMID 9509259
  7. (en) de la Fuente J, Torina A, Naranjo V, Caracappa S, Di Marco V, Alongi A, Russo M, Maggio AR, Kocan KM. « Infection with Anaplasma phagocytophilum in a seronegative patient in Sicily, Italy: case report » Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2005 ; 4 : 15. PMID 16202127 (Voir)
  8. (en) Lebech AM, Hansen K, Pancholi P, Sloan LM, Magera JM, Persing DH. « Immunoserologic evidence of Human Granulocytic Ehrlichiosis in Danish patients with Lyme neuroborreliosis » Scand J Infect Dis. 1998;30(2):173-6. PMID 9730306
  9. (en) Sumption KJ, Wright DJM, Cutler SJ, Dale BAS. « Human ehrlichiosis in the UK ». Lancet. 1995;346:1487-1488. PMID 7491006
  10. (en) Lotric-Furlan S, Petrovec M, Avsic-Zupanc T, Strle F. « Concomitant tickborne encephalitis and human granulocytic ehrlichiosis » Emerg Infect Dis. 2008 ; 11 (3) : 485- 488. PMID 15757574 Texte en ligne.
  11. (en) Remy V, Hansmann Y, De Martino S, Christmann D, P. Brouqui. « Human Anaplasmosis Presenting as Atypical Pneumonitis in France » Clin Infect Dis. 2003;37:846-848. PMID 12955649 Texte intégral.
  12. (en) Billings AN, Teltow GJ, Weaver SC, Walker DH. « Molecular characterization of a novel Rickettsia species from Ixodes scapularis in Texas » Emerging Infectious Diseases. 1998;4(2):305-309. PMID 9621204 Article en Ligne par le CDC
  13. (en) Brouqui P, Raoult D. « Human ehrlichiosis » N Engl J Med. 1994 ;330:1760-1. PMID 8043106
  14. (en) Breitschwerdt EB, Hegarty BC, Hancock SI. « Sequential evaluation of dogs naturally infected with Ehrlichia canis, Ehrlichia chaffeensis, Ehrlichia equi, Ehrlichia ewingii and Bartonella vinsonii » J Clin Microbiol. 1998. 36(9):2645-2651. PMID 9705408
  15. (en) Goodman JL, Nelson C, Vitale B, Madigan JE, Dumler JS, Kurtti TJ. et al. « Direct cultivation of the causative agent of human granulocytic ehrlichiosis » N Engl J Med. 1996;335(5). N Engl J Med. 1996;334(4) PMID 8531996.
  16. (en) Dunn BE, Monson TP, Dumler JS, Morris CC, Westbrook AB, Duncan JL, Dawson JE. et al. « Identification of Ehrlichia chaffeensis morulae in cerebrospinal fluid mononuclear cells » J Clin Microbiol. 1992;30(8):2207-10. Résumé.
  17. (en) IJdo JW, Wu C, Magnarelli LA, Fikrig E. « Serodiagnosis of human granulocytic ehrlichiosis by a recombinant HGE-44-based enzyme-linked immunosorbent assay » J Clin Microbiol. 1999;37(11):3540-4. PMID 10523549
  18. (en) Wormser GP, Dattwyler RJ, Shapiro ED, Halperin JJ, Steere AC, Klempner MS, Krause PJ, Bakken JS, Strle F, Stanek G, Bockenstedt L, Fish D, Dumler JS, Nadelman RB. « The Clinical Assessment, Treatment, and Prevention of Lyme Disease, Human Granulocytic Anaplasmosis, and Babesiosis: Clinical Practice Guidelines by the Infectious Diseases Society of America » Clin Infect Dis. 2006;43:1089-1134. PMID 17029130

Voir aussi

Articles connexes

Bibliographie
  • Poulain C., Mollier P., Coulon J.-B., Lecomte Ph., 2011 : « Santé des élevages : un point critique en régions chaudes », INRA Magazine : alimentation, agriculture, environnement no  19 () - p. X-XII
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